多细胞生物(果蝇)组蛋白修饰位点突变动物模型库的建立及相关原位生物学功能研究

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项目介绍
AI项目解读

基本信息

  • 批准号:
    31671333
  • 项目类别:
    面上项目
  • 资助金额:
    65.0万
  • 负责人:
  • 依托单位:
  • 学科分类:
    C0601.遗传物质结构与功能
  • 结题年份:
    2020
  • 批准年份:
    2016
  • 项目状态:
    已结题
  • 起止时间:
    2017-01-01 至2020-12-31

项目摘要

Histones posttranslational modifications (PTMs) contribute a dynamic regulation role through whole cell life processes in a temporal and spatial context. Although an essential role for histone modifying enzymes in these processes is well established, defining the specific contribution of individual histone residue is less well understood. This challenge is mainly due to the paucity of suitable approaches to genetically engineer multi-copy histone genes in metazoans. We developed an efficient gene targeting method in Drosophila by combining the CRISPR/Cas9 technology, FLP/FRT and phiC31-mediated recombination. By using this system, we generate a Drosophila histone knockout (KO) line and repeatedly do rescue in vivo against this KO line. Rescue results show 20 copies of histone genes are required to generate a phenotypically wild type fly. Here, we describe a new histone mutagenesis platform in Drosophila for generating all histone mutations. Analyzing any histone genotype will allow us systematically to probe the in vivo function of these histone residues and explore their epigenetic regulation mechanism. Owing to the conservation of structure and function of histones in many metazoans, all explanations of histone-associated regulation in fly model will make us better understand epigenetic mechanisms involved in human reproduction, development and disease.
组蛋白翻译后修饰(PTMs)在细胞生命过程中起着重要的时空调控作用。然而目前的研究主要集中在组蛋白修饰酶结构、功能及分子机制方面,对组蛋白修饰位点自身生物学功能与意义的研究尚不多见。这主要归因于目前无法在多细胞生物中对多拷贝组蛋白基因进行遗传操作。本项目尝试将CRISPR/Cas9与Flp/FRT和phiC31重组技术相结合,在模式生物果蝇体内建立组蛋白基因簇敲除及原位组蛋白补偿系统。通过补偿系统,发现20拷贝组蛋白补偿可以让敲除突变体恢复到野生型状态。基于这一拷贝数,我们将大规模地构建所有组蛋位点突变株。通过对突变株表型的分析我们可以系统地阐明组蛋白位点的原位生物学功能和潜在调控机制。由于组蛋白密码在多细胞真核生物中结构与功能上的保守性,本项目中所有组蛋白突变果蝇模型及功能机制的探索,将为哺乳动物包括人类在内的组蛋白修饰在生殖、发育和疾病中的表观遗传学机制的探索提供直接的理论及实践依据。

结项摘要

项目背景与研究内容:.组蛋白翻译后修饰(PTMs)在细胞生命过程中起着重要的时空调控作用。目前的研究主要集中在组蛋白修饰酶结构、功能及分子机制方面,对组蛋白修饰位点自身生物学功能与意义的研究尚不多见。这主要归因于目前无法在多细胞生物中对多拷贝组蛋白基因进行遗传操作。本项目尝试将CRISPR/Cas9与Flp/FRT和phiC31重组技术相结合,在模式生物果蝇体内建立组蛋白基因簇敲除及原位组蛋白补偿系统,并进行突变体果蝇的建立。.取得的结果与数据:(1)建立了果蝇体内组蛋白敲除与补偿体系;(2)建立了组蛋白重要表观修饰位点的动物突变体库;(3)对部分突变体进行在发育等层面的分子机制的探索。.科学意义:由于组蛋白密码在多细胞真核生物中结构与功能上的保守性,本项目中所有组蛋白突变果蝇模型及功能机制的探索,将为哺乳动物包括人类在内的组蛋白修饰在生殖、发育和疾病中的表观遗传学机制的探索提供直接的理论及实践依据。

项目成果

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课题项目:调控A型流感病毒诱导IFN-β表达的机制研究

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本研究聚焦于TRIM2蛋白在A型流感病毒诱导的IFN-β表达中的调控机制。A型流感病毒是全球性健康问题,其感染可导致严重的呼吸道疾病。IFN-β作为关键的抗病毒因子,其表达水平对抗病毒防御至关重要。然而,TRIM2如何调控IFN-β的表达尚未明确。本研究假设TRIM2通过与病毒RNA或宿主因子相互作用,影响IFN-β的产生。我们将采用分子生物学、细胞生物学和免疫学方法,探索TRIM2与A型流感病毒诱导IFN-β表达的关系。预期结果将揭示TRIM2在抗病毒免疫反应中的作用,为开发新的抗病毒策略提供理论基础。该研究对理解宿主抗病毒机制具有重要科学意义,并可能对临床治疗流感病毒感染提供新的视角。

AI项目思路:

科学问题:TRIM2如何调控A型流感病毒诱导的IFN-β表达?
前期研究:已有研究表明TRIM2参与抗病毒反应,但其具体机制尚不明确。
研究创新点:本研究将深入探讨TRIM2在IFN-β表达中的直接作用机制。
技术路线:包括病毒学、分子生物学、细胞培养和免疫检测技术。
关键技术:TRIM2与病毒RNA的相互作用分析,IFN-β启动子活性检测。
实验模型:使用A型流感病毒感染的细胞模型进行研究。

AI技术路线图

        graph TD
          A[研究起始] --> B[文献回顾与假设提出]
          B --> C[实验设计与方法学准备]
          C --> D[A型流感病毒感染模型建立]
          D --> E[TRIM2与病毒RNA相互作用分析]
          E --> F[TRIM2对IFN-β启动子活性的影响]
          F --> G[IFN-β表达水平测定]
          G --> H[TRIM2功能丧失与获得研究]
          H --> I[数据收集与分析]
          I --> J[结果解释与科学验证]
          J --> K[研究结论与未来方向]
          K --> L[研究结束]
      
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