真核基因定点编辑技术优化和基于高通量基因敲除文库搭建的功能性筛选平台在生物医学研究上的应用

结题报告
项目介绍
AI项目解读

基本信息

  • 批准号:
    31430025
  • 项目类别:
    重点项目
  • 资助金额:
    338.0万
  • 负责人:
  • 依托单位:
  • 学科分类:
    C0505.蛋白质、多肽与酶生物化学
  • 结题年份:
    2019
  • 批准年份:
    2014
  • 项目状态:
    已结题
  • 起止时间:
    2015-01-01 至2019-12-31

项目摘要

One of the core questions in the field of biomedical research is the effective and massive association of genes’ function and certain biological, developmental or disease-related process. The recent emergence of gene targeting technology in eukaryotes, especially ZFN, TALENs and the CRSIPR/Cas9 systems have enabled researchers across broad-spectrum of fields to study gene and its function in an unprecedented fashion and efficiency. We have been involved in TALE-related technique development, i.e. the fast assembly methodology of TALE arrays and the complete decoding of TALE RVDs for DNA recognition preference (PLoS One, 2013; Cell Research 2014). We have recently generated a CRISPR/Cas9-mediated gene knockout library in human cells, and developed the complete strategy for functional genomics using this powerful platform (Nature 2014). We propose to upgrade the gene targeting technology, especially the development of the whole genome gene knockout library in eukaryotic cells through refined CRISPR/Cas9 system. With the establishment of the collection of sgRNA libraries, we are determined to screen for host targets essential for the toxicity of both TcdA and TcdB of Clostridium difficile, as well as for the host cell surface proteins important for HCV infection, especially for viral entry and cell-to-cell transmission. The broad application of CRISPR/Cas9 library in functional genomics will undoubtedly promote the fast progress of biological and biomedical research studies.
当前医学生物学领域的核心问题之一,是如何高通量、高效率地确定在特定生理、病理等情况下发挥关键作用的基因产物和通路。最近几年基因打靶技术,特别是ZFN、TALEN、CRISPR/Cas9系统等的出现和发展为科研人员研究高等生物的基因功能、生理病理机制提供极大方便。我们前期在TALE相关技术包括重复模块组装及新DNA碱基识别RVD等方面有许多积累,在利用CRISPR/Cas9系统构建基于基因敲除的功能性筛选平台也有突破性进展(Nature 2014)。我们计划对真核基因定点修饰技术进行优化,特别是建立更加高效的全基因组真核基因敲除文库用于高通量功能性筛选。我们将主要利用这一新型强大的正向遗传筛选平台研究艰难梭菌毒素蛋白A及B的宿主细胞靶位点,以及和丙型肝炎病毒入胞以及在细胞间传递途径中起重要作用的宿主蛋白。真核基因敲除特别是高通量功能性筛选的应用,必将极大地推动广泛的生物医学相关领域的发展。

结项摘要

基于CRISPR系统的高通量功能性筛选技术的建立使人们能够迅速定位与特定生物学过程相关的重要基因。但是,目前的高通量功能性筛选仍然存在许多问题,如筛选范围、分辨率、准确度都有局限。针对上述问题,我们在研究工作中建立并优化了一系列基于高通量基因敲除文库的功能性筛选平台和方法学,并利用该平台成功鉴定了多种病原-宿主相互作用的关键基因,主要研究成果包括:1)建立了利用配对gRNA进行大片段删除和靶向剪接位点进行敲除的方法,实现了对长链非编码RNA进行高通量功能性筛选,为系统发现和解析lncRNA功能提供了强大的工具;2)开发了名为PASTMUS的新方法,实现了对目标蛋白进行单氨基酸精度的功能图谱绘制;3)建立了构建CRISPR文库的新方法iBAR,首次实现了在高MOI条件下的高通量功能性筛选,提高了筛选精度和效率;4)首次报道了名为LEAPER的新型RNA单碱基编辑技术,该技术仅需要在细胞中表达向导RNA即可招募细胞内源脱氨酶实现靶向目标RNA的编辑, 为生命科学基础研究和疾病治疗提供了一种全新的工具;5)针对基因编辑工具发展了一系列延展型应用,如利用基因编辑工具进行染色质成像及表观遗传识别等;6)利用CRISPR筛选技术鉴定发现人新生儿受体蛋白FcRn为B族肠道病毒的脱衣壳受体,发现TRIM26为HCV在宿主细胞中复制所需的关键基因,从而为理解病毒入侵机制及相关药物的开发提供了依据;7)利用CRISPR筛选技术发现了艰难梭菌毒素蛋白A及B进入宿主细胞靶位点。综上所述,该项目完成了既定的研究目标和计划,项目实施所产生的研究成果,包括高通量功能性筛选平台的应用等,将有望促进生物医学相关领域的迅速发展。

项目成果

期刊论文数量(14)
专著数量(0)
科研奖励数量(1)
会议论文数量(0)
专利数量(1)
Programmable RNA editing by recruiting endogenous ADAR using engineered RNAs
通过使用工程 RNA 招募内源 ADAR 进行可编程 RNA 编辑
  • DOI:
    10.1038/s41587-019-0178-z
  • 发表时间:
    2019
  • 期刊:
    Nature Biotechnology
  • 影响因子:
    46.9
  • 作者:
    Qu Liang;Yi Zongyi;Zhu Shiyou;Wang Chunhui;Cao Zhongzheng;Zhou Zhuo;Yuan Pengfei;Yu Ying;Tian Feng;Liu Zhiheng;Bao Ying;Zhao Yanxia;Wei Wensheng
  • 通讯作者:
    Wei Wensheng
Human Neonatal Fc Receptor Is the Cellular Uncoating Receptor for Enterovirus B
人类新生儿 Fc 受体是肠道病毒 B 的细胞脱壳受体
  • DOI:
    10.1016/j.cell.2019.04.035
  • 发表时间:
    2019
  • 期刊:
    Cell
  • 影响因子:
    64.5
  • 作者:
    Zhao Xin;Zhang Guigen;Liu Sheng;Chen Xiangpeng;Peng Ruchao;Dai Lianpan;Qu Xiao;Li Shihua;Song Hao;Gao Zhengrong;Yuan Pengfei;Liu Zhiheng;Li Changyao;Shang Zifang;Li Yan;Zhang Meifan;Qi Jianxun;Wang Han;Du Ning;Wu Yan;Bi Yuhai;Gao Shan;Shi Yi;Yan Jinghua;Z
  • 通讯作者:
    Z
Live visualization of genomic loci with BiFC-TALE.
使用 BiFC-TALE 实时可视化基因组位点。
  • DOI:
    10.1038/srep40192
  • 发表时间:
    2017-01-11
  • 期刊:
    Scientific Reports
  • 影响因子:
    4.6
  • 作者:
    Hu H;Zhang H;Wang S;Ding M;An H;Hou Y;Yang X;Wei W;Sun Y;Tang C
  • 通讯作者:
    Tang C
PASTMUS: mapping functional elements at single amino acid resolution in human cells
PASTMUS:以单个氨基酸分辨率绘制人类细胞中的功能元件
  • DOI:
    10.1186/s13059-019-1897-7
  • 发表时间:
    2019
  • 期刊:
    Genome Biology
  • 影响因子:
    12.3
  • 作者:
    Xinyi Zhang;Di Yue;Yinan Wang;Yuexin Zhou;Ying Liu;Yeting Qiu;Feng Tian;Ying Yu;Zhuo Zhou;Wensheng Wei
  • 通讯作者:
    Wensheng Wei
Interrogating the noncoding genome in a high-throughput fashion
以高通量方式询问非编码基因组
  • DOI:
    10.1093/nsr/nwy138
  • 发表时间:
    2019-05
  • 期刊:
    National Science Review
  • 影响因子:
    20.6
  • 作者:
    Zhou Z;Wei W
  • 通讯作者:
    Wei W

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其他文献

基于卡尔曼滤波的自然电场数据时序反演
  • DOI:
    --
  • 发表时间:
    2017
  • 期刊:
    地球物理学报
  • 影响因子:
    --
  • 作者:
    崔益安;魏文胜;朱肖雄;柳建新
  • 通讯作者:
    柳建新
PASTMUS: mapping functional elements at single amino acid resolution in human cells
PASTMUS:以单个氨基酸分辨率绘制人类细胞中的功能元件
  • DOI:
    doi:10.1186/s13059-019-1897-7
  • 发表时间:
    2019
  • 期刊:
    Genome Biology
  • 影响因子:
    12.3
  • 作者:
    张心怡;岳頔;王轶楠;周悦欣;刘莹;邱叶婷;田峰;于莹;周卓;魏文胜
  • 通讯作者:
    魏文胜

其他文献

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魏文胜的其他基金

新型CRISPR筛选平台的搭建及其在基因功能与染色质调控研究中的应用
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课题项目:调控A型流感病毒诱导IFN-β表达的机制研究

AI项目摘要:

本研究聚焦于TRIM2蛋白在A型流感病毒诱导的IFN-β表达中的调控机制。A型流感病毒是全球性健康问题,其感染可导致严重的呼吸道疾病。IFN-β作为关键的抗病毒因子,其表达水平对抗病毒防御至关重要。然而,TRIM2如何调控IFN-β的表达尚未明确。本研究假设TRIM2通过与病毒RNA或宿主因子相互作用,影响IFN-β的产生。我们将采用分子生物学、细胞生物学和免疫学方法,探索TRIM2与A型流感病毒诱导IFN-β表达的关系。预期结果将揭示TRIM2在抗病毒免疫反应中的作用,为开发新的抗病毒策略提供理论基础。该研究对理解宿主抗病毒机制具有重要科学意义,并可能对临床治疗流感病毒感染提供新的视角。

AI项目思路:

科学问题:TRIM2如何调控A型流感病毒诱导的IFN-β表达?
前期研究:已有研究表明TRIM2参与抗病毒反应,但其具体机制尚不明确。
研究创新点:本研究将深入探讨TRIM2在IFN-β表达中的直接作用机制。
技术路线:包括病毒学、分子生物学、细胞培养和免疫检测技术。
关键技术:TRIM2与病毒RNA的相互作用分析,IFN-β启动子活性检测。
实验模型:使用A型流感病毒感染的细胞模型进行研究。

AI技术路线图

        graph TD
          A[研究起始] --> B[文献回顾与假设提出]
          B --> C[实验设计与方法学准备]
          C --> D[A型流感病毒感染模型建立]
          D --> E[TRIM2与病毒RNA相互作用分析]
          E --> F[TRIM2对IFN-β启动子活性的影响]
          F --> G[IFN-β表达水平测定]
          G --> H[TRIM2功能丧失与获得研究]
          H --> I[数据收集与分析]
          I --> J[结果解释与科学验证]
          J --> K[研究结论与未来方向]
          K --> L[研究结束]
      
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