Regulation of Ribosome Biogenesis in Hematopoietic Stem Cells
造血干细胞核糖体生物合成的调控
基本信息
- 批准号:10689326
- 负责人:
- 金额:$ 60.24万
- 依托单位:
- 依托单位国家:美国
- 项目类别:
- 财政年份:2020
- 资助国家:美国
- 起止时间:2020-09-18 至 2025-08-31
- 项目状态:未结题
- 来源:
- 关键词:AffectAllelesAllogenicBiochemicalBiogenesisBiologicalBloodBlood CellsBone MarrowBone Marrow TransplantationBone marrow failureCell LineCell MaintenanceCell physiologyCellsClinicalClinical TreatmentCollaborationsCytoplasmDataDefectDiseaseEtiologyExhibitsFailureFunctional disorderGenesGeneticGenetic SuppressionGenomicsGoalsGrowthHematopoiesisHematopoieticHematopoietic stem cellsHumanKnockout MiceLinkMalignant NeoplasmsMarrowMediatingMutationMyeloproliferative diseasePathway interactionsPatientsPolyribosomesPopulationPredispositionProkaryotic CellsProtein BiosynthesisProteinsProteomicsRegistriesRegulationResearchRibosomal ProteinsRibosomesRoleShwachman-Diamond syndromeSignal TransductionStem cell transplantStructureSyndromeTestingTherapeuticTherapeutic InterventionTranslation Process ProteinTranslationsTransplantationUbiquitinUbiquitinationValidationYeastsbone marrow failure syndromecancer predispositioncell growthconditional knockoutepigenomicsexome sequencinggenetic analysisin vivoinsightinterestknock-downlentivirally transducednovelnovel therapeutic interventionnovel therapeuticspolypeptidepreventprogramsreconstitutionribosome profilingribosomopathyself-renewalsmall hairpin RNAstem cell functionstem cellstranscriptometranscriptome sequencingtreatment strategyubiquitin-protein ligase
项目摘要
Abstract
Tightly-regulated protein synthesis rates are critical for hematopoietic stem cell (HSC) maintenance and function.
Mutations in ribosome proteins or genes that affect ribosome biogenesis cause “ribosomopathies”, a class of
bone marrow failure (BMF) syndromes. As prominently illustrated by Shwachman-Diamond Syndrome (SDS), a
BMF disease with progressive hematopoietic stem and progenitor cell (HSPC) failure and predisposition to
myeloid malignancies, is driven by germline biallelic mutations in the assembly factors essential for the
maturation of the 60S ribosome subunit. However, how ribosome assembly is regulated in HSCs remains poorly
understood, as is its contribution to hematopoietic dysfunction. Importantly, other than allogeneic stem cell
transplantation, therapeutic interventions that mitigate the HSPC defects in BMF do not exist. This application is
based on our new studies that uncovered a novel role for the E3 ubiquitin ligase, HectD1, in regulating HSC
function via ribosome biogenesis. Hectd1-deficient HSCs exhibit a striking defect in transplantation ability and
self-renewal, concomitant with a reduction in global protein synthesis. The mechanism underlying HSC
dysfunction upon Hectd1 deficiency is directly linked to aberrant ribosome assembly by ubiquitinating and
regulating the stability of ZNF622, a critical biogenesis factor for the maturation of the 60S large ribosomal
subunit in the cytoplasm. Depletion of HectD1 led to an accumulation of ZNF622 and the anti-association factor
eIF6 on the 60S subunit, decreased 80S monosome to 60S ratio, consistent with a subunit joining defect
associated with SDS-like diseases. Importantly, knockdown of ZNF622 in Hectd1-deficient cells restored protein
synthesis and HSC reconstitution capacity. This finding represents a rare in vivo example of genetic suppression
of HSC defects associated with dysfunctional ribosome biogenesis. The implications of this novel pathway to the
etiology of HSC failure and clinical treatment of “ribosomopathies”, mandates detailed mechanistic
understanding. Here, we propose comprehensive and in-depth analyses on the role of HectD1 and ZNF622 in
ribosome biogenesis and HSCs. In aim 1, we propose to investigate the roles of HectD1 and ZNF622 in HSCs
and how they interact to regulate HSC function, using a combination of complementary genetics, genomics, and
biochemical approaches. In aim 2, we will systematically analyze if HectD1/ZNF622 affects different aspects of
protein translation controls. Moreover, we will perform quantitative proteomics to assess if ribosome levels or
ribosome composition is affected by Hectd1/ZNF622 loss. In aim 3, we will interrogate potential dysregulation of
HECTD1 and ZNF622 in human BMF syndromes and explore therapeutic potential of targeting ZNF622 for the
treatment of BMF with dysfunctional ribosome biogenesis. Our study implicates a previously unappreciated role
of ubiquitination in regulating HSC function via controlling ribosome biogenesis factors, which are dysregulated
in ribosomopathies. Our findings will likely have significant impact on the therapeutic potential of modulating
ubiquitination and/or ribosome biogenesis factors in restoring HSC functions in BMF syndromes.
抽象的
严格调节的蛋白质合成速率对于造血干细胞 (HSC) 的维持和功能至关重要。
影响核糖体生物合成的核糖体蛋白或基因突变会导致“核糖体病”,这是一类
骨髓衰竭 (BMF) 综合征如舒瓦赫曼-戴蒙德综合征 (SDS) 所示,是一种
BMF 疾病伴有进行性造血干细胞和祖细胞 (HSPC) 衰竭并易发生
骨髓恶性肿瘤是由装配因子中的种系双等位基因突变驱动的,这些因子对于
60S 核糖体亚基的成熟然而,HSC 中核糖体组装的调控方式仍然很差。
重要的是,它与同种异体干细胞不同,对造血功能障碍也有贡献。
移植,减轻 BMF 中 HSPC 缺陷的治疗干预措施不存在。
基于我们的新研究,该研究揭示了 E3 泛素连接酶 HectD1 在调节 HSC 中的新作用
Hectd1缺陷的HSC在移植能力和功能方面表现出显着的缺陷。
自我更新,伴随着整体蛋白质合成的减少 HSC 的机制。
Hectd1 缺陷导致的功能障碍与泛素化和核糖体组装异常直接相关。
调节 ZNF622 的稳定性,ZNF622 是 60S 大核糖体成熟的关键生物发生因子
细胞质中的 HectD1 亚基的消耗导致 ZNF622 和抗关联因子的积累。
60S 亚基上的 eIF6,降低了 80S 单体与 60S 的比率,与亚基连接缺陷一致
重要的是,Hectd1 缺陷细胞中 ZNF622 的敲除可恢复蛋白质。
合成和 HSC 重建能力这一发现代表了基因抑制的罕见体内例子。
与功能失调的核糖体生物发生相关的 HSC 缺陷的研究,这一新途径对
HSC 失败的病因学和“核糖体病”的临床治疗,要求详细的机制
在此,我们对HectD1和ZNF622在其中的作用进行全面深入的分析。
核糖体生物发生和 HSC 在目标 1 中,我们建议研究 HectD1 和 ZNF622 在 HSC 中的作用。
以及它们如何结合互补遗传学、基因组学和其他方法相互作用来调节 HSC 功能
在目标 2 中,我们将系统分析 HectD1/ZNF622 是否影响不同方面。
此外,我们将进行定量蛋白质组学来评估核糖体水平或
核糖体组成受 Hectd1/ZNF622 丢失的影响 在目标 3 中,我们将探讨 Hectd1/ZNF622 的潜在失调。
HECTD1 和 ZNF622 在人类 BMF 综合征中的作用,并探索靶向 ZNF622 的治疗潜力
我们的研究揭示了核糖体生物合成功能障碍对 BMF 的治疗作用。
泛素化通过控制失调的核糖体生物发生因子来调节 HSC 功能
我们的发现可能会对调节的治疗潜力产生重大影响。
泛素化和/或核糖体生物发生因素在 BMF 综合征中恢复 HSC 功能。
项目成果
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