Spatially resolved single-cell patterns of drug-resistant ovarian cancers

耐药卵巢癌的空间分辨单细胞模式

基本信息

项目摘要

Project Summary Ovarian cancers remain one of the deadliest cancers affecting women. Tumors commonly acquire resistance to first-line chemotherapeutics, and only 30% of patients survive beyond 5 years. Novel targeted combination therapies are needed to improve long-term survival outcomes and will depend on an improved understanding of the molecular and genetic mechanisms of drug resistance. Previous work has used next-generation bulk sequencing approaches to globally profile genetic signatures of drug resistance in ovarian cancer tissue. However, rare cells in a highly heterogeneous 3D tissue context may hold the key to understanding these complex processes, and such rare cells are notoriously difficult to identify using these standard methods. We will use an in vivo patient derived xenograft (PDX) model of high grade serous ovarian cancer (HSGSOC) representing multiple different genetic backgrounds. HGSOC PDXs will be allowed to acquire resistance to PARP inhibitor talazoparib. Transcriptional signatures of PARP inhibitor resistance will be assessed using single cell RNA sequencing of single cells isolated from tumor tissue fully resistant to inhibitor as well as from tissue collected at intermediate time points. scRNA seq data will be mined to gain transcriptional signatures of (1) component cell populations and (2) candidate genes driving the resistant phenotype. We will use multiplex single molecule FISH and light sheet microscopy to image target (n ~ 100) mRNA species in thick tissue blocks. We will analyze 3D image datasets to identify resistant cancer cells and chart their 3D position in relation to supporting cell types that express relevant cell signaling ligands and/or receptors and additional tumor features (e.g. stroma, blood vessels). Lastly, we will choose target genes that will be functionally validated in relevant cell culture and additional PDX in vivo models. By examining single cell transcriptional profiles, we will greatly advance our understanding of how the 3D tumor tissue microenvironment allows and encourages rare cells with pre-resistant transcriptional programs to escape PARP inhibitor treatment. Along with an improved understanding of the dynamics of drug resistance, the proposed research has the potential to suggest novel combination treatments that could be exploited in the future to more effectively eliminate HGSOC and prevent recurrence of drug resistant tumors.
项目概要 卵巢癌仍然是影响女性最致命的癌症之一。肿瘤通常会获得 对一线化疗药物产生耐药性,只有 30% 的患者存活超过 5 年。小说 需要靶向联合疗法来改善长期生存结果,并且取决于 更好地了解耐药性的分子和遗传机制。以前的 工作使用下一代批量测序方法来全球分析基因特征 卵巢癌组织中的耐药性。然而,高度异质的 3D 组织中的稀有细胞 上下文可能是理解这些复杂过程的关键,而这种罕见的细胞是 众所周知,使用这些标准方法很难识别。我们将使用源自患者体内的 高级别浆液性卵巢癌 (HSGSOC) 的异种移植 (PDX) 模型代表多种不同的 遗传背景。 HGSOC PDX 将被允许获得对 PARP 抑制剂他拉佐帕尼 (talazoparib) 的耐药性。 PARP 抑制剂耐药性的转录特征将使用单细胞 RNA 进行评估 对从对抑制剂完全耐药的肿瘤组织以及组织中分离的单细胞进行测序 在中间时间点收集。 scRNA seq 数据将被挖掘以获得转录特征 (1) 组成细胞群和 (2) 驱动抗性表型的候选基因。我们将使用 多重单分子 FISH 和光片显微镜对目标 (n ~ 100) mRNA 物种进行成像 厚的组织块。我们将分析 3D 图像数据集来识别耐药癌细胞并绘制它们的图表 与表达相关细胞信号配体的支持细胞类型相关的 3D 位置和/或 受体和其他肿瘤特征(例如基质、血管)。最后,我们将选择目标基因 将在相关细胞培养物和其他 PDX 体内模型中进行功能验证。经过 通过检查单细胞转录谱,我们将极大地加深对 3D 肿瘤组织微环境允许并鼓励具有预抗性转录的稀有细胞 逃避 PARP 抑制剂治疗的计划。随着对动力学的进一步了解 对于耐药性,拟议的研究有可能提出新的联合治疗方法 将来可以利用它来更有效地消除 HGSOC 并防止再次发生 耐药肿瘤。

项目成果

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