发掘启动减数分裂的基因网络

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项目介绍
AI项目解读

基本信息

  • 批准号:
    31671495
  • 项目类别:
    面上项目
  • 资助金额:
    60.0万
  • 负责人:
  • 依托单位:
  • 学科分类:
    C1206.生殖细胞及性别决定
  • 结题年份:
    2020
  • 批准年份:
    2016
  • 项目状态:
    已结题
  • 起止时间:
    2017-01-01 至2020-12-31

项目摘要

Meiosis, which reduces a diploid germ cell to a haploid gamete, is the fundamental event for sexual reproduction. Although a few external cues that trigger meiosis have been identified, the internal program that switches germ cells from mitotic to meiotic track is largely unknown. Meiosis remains the major obstacle for in vitro reconstitution of gametogenesis. We sought to explore the genetic program that governs the initiation of meiosis in Drosophila. Taking advantage of the accurate selection by laser microdissection from wildtype testes and the mutants that arrest the germ cells at mitotic or meiotic stage, we obtained massive transcriptome RNA-seq data and carried out preliminary high throughput analyses (differential expression, alternative splicing, and 3’UTR profiling) to look for the differences between mitotic and meiotic cells. These provided us candidate genes for further genetic screen and functional analyses. Moreover, we will extend our study to the mammalian system once we discover the highly conserved key factors in meiosis initiation.
减数分裂是有性生殖过程中产生单倍体配子的核心环节。虽然有丝分裂向减数分裂转化的一些外源信号已被发现,内源因子和机制待解,因而操纵生殖细胞正确起始减数分裂是实现体外配子形成的一大障碍。我们以果蝇为模式发掘启动减数分裂的基因网络。我们用激光显微切割准确分离了野生型有丝分裂和减数分裂的生殖细胞;利用一系列导致生殖细胞发育停滞的突变获得了富集有丝分裂或减数分裂的生殖细胞,然后进行了大规模转录组RNA-seq。从转录后的差异性表达、可变剪切、3’UTR变化等方面初步分析了有丝和减数分裂的广泛差异。我们将更精细地分离减数分裂前期的生殖细胞,并深入分析比较野生型和突变体中有丝分裂和减数分裂细胞的表达谱特征。同时,利用高通量数据找到候选基因进行遗传筛选,并对筛选得到的重要因子进行体内外功能研究。如果关键因子具有高度保守性,我们还将构建哺乳动物模型解析减数分裂的启动机制。

结项摘要

减数分裂是有性生殖过程中产生单倍体配子的核心环节。虽然有丝分裂向减数分裂转化的一些外源信号已被发现,内源因子和机制待解,因而操纵生殖细胞正确起始减数分裂是实现体外配子形成的一大障碍。我们以果蝇为模式发掘启动减数分裂的基因网络。我们用激光显微切割准确分离了野生型有丝分裂和减数分裂的生殖细胞;利用一系列导致生殖细胞发育停滞的突变获得了富集有丝分裂或减数分裂的生殖细胞,通过高通量数据分析找到了一些候选基因,然后进行遗传筛选和体内功能验证,并对筛选得到的保守因子进行体内外功能研究。在我们先前关于mRNA 3'加工与减数分裂启动之间相关性的研究基础上,我们发现CLP1家族核酸激酶Cbc是调节从有丝分裂到减数分裂的程序的一部分。在果蝇睾丸中进行遗传操作,我们证明核定位的Cbc是启动减数分裂所必需的。结合生化和遗传方法,我们揭示了在此过程中Cbc在物理和/或遗传上与Tsen54和TER94(VCP同源物)相互作用。 Tsen54的C端对于与Cbc结合既是必需的又是充分的。此外,我们在亚细胞定位和果蝇繁殖力的测定中证明了Cbc与哺乳动物CLP1之间的功能保守性。由于在动物模型的神经退行性变中也发现了CLP1、TSEN复合物、及VCP,因此涉及这些因子的机制似乎在配子发生和神经发生中共有。

项目成果

期刊论文数量(1)
专著数量(0)
科研奖励数量(0)
会议论文数量(0)
专利数量(0)
Notch signaling governs the expression of glypican Daily to define the stem cell niche
Notch 信号控制磷脂酰肌醇蛋白聚糖的表达 Daily 来定义干细胞生态位
  • DOI:
    10.1242/bio.047696
  • 发表时间:
    2020
  • 期刊:
    Biology Open
  • 影响因子:
    2.4
  • 作者:
    Zhao Songhua;Wu Chan;Gao Zhiyang;Lin Xin;Guo Zheng;Wang Zhaohui
  • 通讯作者:
    Wang Zhaohui

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我国耕地数量、质量与空间变化研究综述
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  • 通讯作者:
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AI项目解读示例

课题项目:调控A型流感病毒诱导IFN-β表达的机制研究

AI项目摘要:

本研究聚焦于TRIM2蛋白在A型流感病毒诱导的IFN-β表达中的调控机制。A型流感病毒是全球性健康问题,其感染可导致严重的呼吸道疾病。IFN-β作为关键的抗病毒因子,其表达水平对抗病毒防御至关重要。然而,TRIM2如何调控IFN-β的表达尚未明确。本研究假设TRIM2通过与病毒RNA或宿主因子相互作用,影响IFN-β的产生。我们将采用分子生物学、细胞生物学和免疫学方法,探索TRIM2与A型流感病毒诱导IFN-β表达的关系。预期结果将揭示TRIM2在抗病毒免疫反应中的作用,为开发新的抗病毒策略提供理论基础。该研究对理解宿主抗病毒机制具有重要科学意义,并可能对临床治疗流感病毒感染提供新的视角。

AI项目思路:

科学问题:TRIM2如何调控A型流感病毒诱导的IFN-β表达?
前期研究:已有研究表明TRIM2参与抗病毒反应,但其具体机制尚不明确。
研究创新点:本研究将深入探讨TRIM2在IFN-β表达中的直接作用机制。
技术路线:包括病毒学、分子生物学、细胞培养和免疫检测技术。
关键技术:TRIM2与病毒RNA的相互作用分析,IFN-β启动子活性检测。
实验模型:使用A型流感病毒感染的细胞模型进行研究。

AI技术路线图

        graph TD
          A[研究起始] --> B[文献回顾与假设提出]
          B --> C[实验设计与方法学准备]
          C --> D[A型流感病毒感染模型建立]
          D --> E[TRIM2与病毒RNA相互作用分析]
          E --> F[TRIM2对IFN-β启动子活性的影响]
          F --> G[IFN-β表达水平测定]
          G --> H[TRIM2功能丧失与获得研究]
          H --> I[数据收集与分析]
          I --> J[结果解释与科学验证]
          J --> K[研究结论与未来方向]
          K --> L[研究结束]
      
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