新型嗜热基因组编辑系统的构建及研究

结题报告
项目介绍
AI项目解读

基本信息

  • 批准号:
    31760318
  • 项目类别:
    地区科学基金项目
  • 资助金额:
    38.0万
  • 负责人:
  • 依托单位:
  • 学科分类:
    C0607.基因组学
  • 结题年份:
    2021
  • 批准年份:
    2017
  • 项目状态:
    已结题
  • 起止时间:
    2018-01-01 至2021-12-31

项目摘要

The genome editing is driving a new revolution in the field of life sciences. However, the existed genome editing systems are all constructed based on mesophilic microorganism and can not be applied in thermophilic microorganism, the existed genetic tools used in thermophilic microorganism don’t have the function of genome editing, this situation seriously restrict the development of thermophilic microorganism. Therefore, in order to solve the lack of the thermophilic genome editing tool in thermophilic microorganism, and to promote the research and application of thermophilic microorganisms, it is needed to develop a thermophilic genome editing system. This project intends to construct the thermophilic genome editing system from two different aspects. On the one hand, we chose the CRISPR-Cas9 system as the foundation to improve their thermostability through directed evolution of Cas9 nuclease and gRNA. On the other hand, we chose the Thermotargetron system, which was constructed previously and used to gene targeting in thermophilic microorganisms, to construct a new genome editing tools through inactivating the reverse transcriptase activity of intron edited protein (IEP). The mutation of IEP will block the retrohoming effect of group II introns, and leading to a double strands break, then the DNA damage will be repaired by host cell and finally to realize the genome editing. Based on the combination of this two aspects, we will finally construct a high efficiency thermophilic genome editing system, which will greatly promote the study and application of thermophiles.
基因组编辑技术推动了生命科学研究的重大变革,但现有基因组编辑系统均是基于中温微生物开发,不能在嗜热微生物中应用,而已有的嗜热遗传改造工具又不具备基因组编辑功能,这一现状严重制约了嗜热微生物的基因工程研究。本项目拟从两个方面入手,通过对现有遗传改造工具的优化升级,构建高效、特异的嗜热基因组编辑工具:一方面,以中温基因组编辑系统CRISPR-Cas9为基础,通过定向进化提高其核心元件Cas9核酸酶和gRNA的热稳定性,从而建立新型的嗜热CRISPR系统;另一方面,以前期建立的嗜热打靶工具Thermotargetron为基础,通过突变其内含子编码蛋白IEP反转录酶活性,使其失去“归巢”功能而产生双链DNA定点断裂,结合宿主DNA修复机制实现基因组编辑功能。基于上述双管齐下的研究策略,最终获得基因编辑效率高、热稳定好的嗜热基因组编辑系统,为嗜热微生物的遗传改造及功能研究提供新工具。

结项摘要

现有基因编辑工具都是嗜中温基因编辑工具,缺少嗜热基因编辑工具。本项目的目的是构建新型嗜热基因编辑工具,主要从以下两个角度开展研究:第一,以目前广泛应用的CRISPR-Cas9为基础,通过定向改造构建Thermo-CRISPR。第二,以具有基因打靶功能的嗜热II型内含子为基础,通过失活其反转录酶活性,阻断其在靶位点的归巢,引入DNA损伤,从而构建基于嗜热II型内含子的Thermo-InGE基因编辑系统。本项目在执行过程中,基于CRISPR-Cas9的嗜热基因编辑系统已有论文发表,因此本项目主要从嗜热II型内含子角度继续开展研究。首先,我们分析并筛选了影响嗜热II型内含子编码蛋白(IEP)反转录功能的关键氨基酸位点,构建了15个突变型IEP蛋白,并以此为基础构建了基于嗜热II型内含子的Thermo-InGE系统,然后,我们分析了Thermo-InGE系统在没有同源臂情况下的非同源末端链接功能以及在有同源臂情况下的同源重组功能。结果表明,在目前分析条件下, Thermo-InGE利用非同源末端连接机制和同源重组机制实现DNA损伤修复的效率都极低,且无论哪种情况下均存在细胞大量死亡的现象。分析其原因可能在于:第一,检测条件尚不适合,需要改进检测方法和分析条件。第二,内含子RNA或IEP蛋白的占位影响了非同末端链接和同源重组的功能。尽管Thermo-InGE在目前条件下仍不能进行基因编辑,但Thermo-InGE造成细胞大量死亡的现象,说明Thermo-InGE能够在靶位点引入DNA损伤,具有基因编辑的潜能,因此需要继续优化。此外,我们发现了嗜热II型内含子的一个新的碱基识别规律,即IBS2b/EBS2b位点的T/A碱基配对能够显著提高其基因打靶效率,基因打靶效率从野生型的24.5%提高到61.9%,为构建高效嗜热基因编辑工具提供了新的突破口。

项目成果

期刊论文数量(14)
专著数量(0)
科研奖励数量(0)
会议论文数量(0)
专利数量(1)
艰难梭菌sigB基因簇CRISPR-Cas9敲除载体的构建及验证
  • DOI:
    10.19367/j.cnki.1000-2707.2019.07.002
  • 发表时间:
    2019
  • 期刊:
    贵州医科大学学报
  • 影响因子:
    --
  • 作者:
    陈相好;蔡梦迪;陈峥宏;谷俊莹;文学琴;洪伟;崔古贞
  • 通讯作者:
    崔古贞
Spatial heterogeneity and temporal dynamics of mosquito population density and community structure in Hainan Island, China.
海南岛蚊种群密度和群落结构的空间异质性和时间动态
  • DOI:
    10.1186/s13071-020-04326-5
  • 发表时间:
    2020-09-04
  • 期刊:
    Parasites & vectors
  • 影响因子:
    3.2
  • 作者:
    Li Y;Zhou G;Zhong S;Wang X;Zhong D;Hemming-Schroeder E;Yi G;Fu F;Fu F;Cui L;Cui G;Yan G
  • 通讯作者:
    Yan G
Enhancing tricarboxylate transportation-related NADPH generation to improve biodiesel production by Aurantiochytrium
增强三羧酸盐运输相关的 NADPH 生成,以提高 Aurantiochytrium 的生物柴油产量
  • DOI:
    10.1016/j.algal.2019.101505
  • 发表时间:
    2019-06-01
  • 期刊:
    ALGAL RESEARCH-BIOMASS BIOFUELS AND BIOPRODUCTS
  • 影响因子:
    5.1
  • 作者:
    Cui, Guzhen;Wang, Zhuojun;Song, Xiaojin
  • 通讯作者:
    Song, Xiaojin
Multiplexed CRISPR-Cpf1-Mediated Genome Editing in Clostridium difficile toward the Understanding of Pathogenesis of C. difficile Infection
艰难梭菌中多重 CRISPR-Cpf1 介导的基因组编辑有助于了解艰难梭菌感染的发病机制
  • DOI:
    10.1021/acssynbio.8b00087
  • 发表时间:
    2018-06-01
  • 期刊:
    ACS SYNTHETIC BIOLOGY
  • 影响因子:
    4.7
  • 作者:
    Hong, Wei;Zhang, Jie;Wang, Yi
  • 通讯作者:
    Wang, Yi
内含子编码蛋白Mg(2+)结合位点功能分析及验证
  • DOI:
    10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2020-0012
  • 发表时间:
    2020
  • 期刊:
    生物技术通报
  • 影响因子:
    --
  • 作者:
    崔古贞;陈相好;洪伟;张峥嵘;綦廷娜;陈峥宏
  • 通讯作者:
    陈峥宏

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其他文献

敲除PaLoc毒力岛的无毒性艰难梭菌菌株的构建
  • DOI:
    --
  • 发表时间:
    2019
  • 期刊:
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  • 影响因子:
    --
  • 作者:
    饶凤琴;程玉梅;吴昌学;王义;崔古贞;齐晓岚;洪伟
  • 通讯作者:
    洪伟
艰难梭菌中粪肠球菌污染的去除方法
  • DOI:
    --
  • 发表时间:
    2019
  • 期刊:
    贵州医科大学学报
  • 影响因子:
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  • 作者:
    饶凤琴;程玉梅;张婷;周青帅;崔古贞;齐晓岚;洪伟
  • 通讯作者:
    洪伟
艰难梭菌黏附因子研究进展
  • DOI:
    --
  • 发表时间:
    2019
  • 期刊:
    贵州医科大学学报
  • 影响因子:
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  • 作者:
    饶凤琴;吴昌学;崔古贞;程玉梅;齐晓岚;洪伟
  • 通讯作者:
    洪伟
Cas9蛋白的克隆表达、分离纯化及多克隆抗体制备
  • DOI:
    --
  • 发表时间:
    2019
  • 期刊:
    贵州医科大学学报
  • 影响因子:
    --
  • 作者:
    刘芳;卢婷;蔡梦迪;吴芳草;陈相好;王彩霞;崔古贞;陈峥宏
  • 通讯作者:
    陈峥宏
艰难梭菌基因编辑技术研究进展
  • DOI:
    --
  • 发表时间:
    2019
  • 期刊:
    生物工程学报
  • 影响因子:
    --
  • 作者:
    洪伟;万雯;崔古贞;官志忠;齐晓岚;禹文峰
  • 通讯作者:
    禹文峰

其他文献

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崔古贞的其他基金

大肠杆菌新型多功能聚合酶催化机制及其生物学功能研究
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    31500078
  • 批准年份:
    2015
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    18.0 万元
  • 项目类别:
    青年科学基金项目

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课题项目:调控A型流感病毒诱导IFN-β表达的机制研究

AI项目摘要:

本研究聚焦于TRIM2蛋白在A型流感病毒诱导的IFN-β表达中的调控机制。A型流感病毒是全球性健康问题,其感染可导致严重的呼吸道疾病。IFN-β作为关键的抗病毒因子,其表达水平对抗病毒防御至关重要。然而,TRIM2如何调控IFN-β的表达尚未明确。本研究假设TRIM2通过与病毒RNA或宿主因子相互作用,影响IFN-β的产生。我们将采用分子生物学、细胞生物学和免疫学方法,探索TRIM2与A型流感病毒诱导IFN-β表达的关系。预期结果将揭示TRIM2在抗病毒免疫反应中的作用,为开发新的抗病毒策略提供理论基础。该研究对理解宿主抗病毒机制具有重要科学意义,并可能对临床治疗流感病毒感染提供新的视角。

AI项目思路:

科学问题:TRIM2如何调控A型流感病毒诱导的IFN-β表达?
前期研究:已有研究表明TRIM2参与抗病毒反应,但其具体机制尚不明确。
研究创新点:本研究将深入探讨TRIM2在IFN-β表达中的直接作用机制。
技术路线:包括病毒学、分子生物学、细胞培养和免疫检测技术。
关键技术:TRIM2与病毒RNA的相互作用分析,IFN-β启动子活性检测。
实验模型:使用A型流感病毒感染的细胞模型进行研究。

AI技术路线图

        graph TD
          A[研究起始] --> B[文献回顾与假设提出]
          B --> C[实验设计与方法学准备]
          C --> D[A型流感病毒感染模型建立]
          D --> E[TRIM2与病毒RNA相互作用分析]
          E --> F[TRIM2对IFN-β启动子活性的影响]
          F --> G[IFN-β表达水平测定]
          G --> H[TRIM2功能丧失与获得研究]
          H --> I[数据收集与分析]
          I --> J[结果解释与科学验证]
          J --> K[研究结论与未来方向]
          K --> L[研究结束]
      
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