FRET imaging of protein-protein interactions inside living cells
活细胞内蛋白质-蛋白质相互作用的 FRET 成像
基本信息
- 批准号:8746481
- 负责人:
- 金额:$ 85.54万
- 依托单位:
- 依托单位国家:美国
- 项目类别:
- 财政年份:
- 资助国家:美国
- 起止时间:至
- 项目状态:未结题
- 来源:
- 关键词:Advisory CommitteesAnisotropyBiophotonicsBrainCa(2+)-Calmodulin Dependent Protein KinaseCalciumCalcium SpikesCell physiologyCellsCollaborationsDevelopmentEnergy TransferEnzymesFluorescenceFluorescence AnisotropyFluorescence MicroscopyFluorescence Resonance Energy TransferFrequenciesGreen Fluorescent ProteinsHeartHeart DiseasesHumanImageIndividualInstitutesLabelLaboratoriesLearningLifeLinkLogisticsMeasuresMediatingMemoryMethodologyMethodsMicroscopeMicroscopyMissionMolecularMonitorNanotechnologyNational Institute on Alcohol Abuse and AlcoholismPhosphotransferasesPhysiologicalPhysiologyPlayPresynaptic TerminalsProductionProteinsResearchRoleSiteSpectrum AnalysisStructureSynapsesTechniquesTimeTranslationsUnited States National Institutes of HealthVariantcalmodulin-dependent protein kinase IIdesigndetectorfluorescence imagingfluorophoreimaging modalityimaging probeinterestneuronal cell bodyprogramsprotein complexprotein protein interactionspectroscopic imagingsynaptic functiontool developmenttwo-photon
项目摘要
The principal aim of the Section on Cellular Biophotonics is to use imaging and spectroscopy techniques, such as two-photon microscopy, spectral imaging, fluorescence lifetime microscopy, fluorescence correlation spectroscopy (FCS), and fluorescence anisotropy analysis to study how protein complexes regulate synaptic function in living cells. Recently, we have concentrated our efforts on utilizing Forster Resonance Energy Transfer (FRET) to monitor protein-protein interactions. This method has great potential for studying protein interactions because it is sensitive to changes in the distance separating two fluorophores on the 1-10 nm scale. FRET imaging in conjunction with the development of spectral variants of Green Fluorescent Protein (GFP) provides the opportunity to genetically tag synaptic proteins of interest and monitor their interactions with other labeled proteins in real time.
Currently we have 3 projects in the lab. The first project is involved in building a two-photon microscope specifically designed to study protein complexes in living cells. The microscope we are assembling will be capable of simultaneously measuring time resolved fluorescence anisotropy, and the fluctuations in fluorescence intensity that can then be analyzed by fluorescence correlation spectroscopy (FCS). Our second project uses anisotropy lifetime decay analysis and FCS analysis to monitor changes in the multimeric structure of Cam kinase-II. In the brain this abundant synaptic enzyme is thought to be a calcium spike frequency detector, and has been shown to play a pivotal role in learning and memory. In the heart CaMKII activity has been linked to several forms of heart disease. Our results indicate that structural changes associated with CaM kinase-II activation can be detected using anisotropy imaging and FCS. We now wish to image the activation of this protein complex in living cells. Our third project is aimed at applying the FRET and FCS methodologies developed in our lab in collaboration with Drs. Anne Kenworthy and Eric Long.
细胞生物素化学部分的主要目的是使用成像和光谱技术,例如两光子显微镜,光谱成像,荧光寿命显微镜,荧光相关光谱(FCS)和荧光各向异性分析来研究如何蛋白质调节活细胞的蛋白质。最近,我们集中精力利用Forster共振能量转移(FRET)来监测蛋白质 - 蛋白质相互作用。该方法具有研究蛋白质相互作用的巨大潜力,因为它对距离的变化敏感,将两个荧光团以1-10 nm的比例分开。 FRET成像结合了绿色荧光蛋白(GFP)的光谱变体的发展提供了机会,可以实时对具有遗传标记感兴趣的突触蛋白进行遗传标记突触蛋白,并实时监测其与其他标记蛋白的相互作用。
目前,我们在实验室中有3个项目。第一个项目涉及构建专为研究活细胞中蛋白质复合物而设计的两光子显微镜。我们组装的显微镜将能够同时测量时间分辨的荧光各向异性,并且荧光强度的波动可以通过荧光相关光谱(FCS)进行分析。我们的第二个项目使用各向异性寿命衰减分析和FCS分析来监测CAM激酶-II多聚体结构的变化。在大脑中,这种丰富的突触酶被认为是钙尖峰频率检测器,并且已被证明在学习和记忆中起着关键作用。在心脏中,CaMKII活性与多种形式的心脏病联系在一起。我们的结果表明,可以使用各向异性成像和FCS检测与CAM激酶-II激活相关的结构变化。现在,我们希望想象活细胞中这种蛋白质复合物的激活。我们的第三个项目旨在应用与DRS合作在实验室中开发的FRET和FCS方法。安妮·肯沃西(Anne Kenworthy)和埃里克·朗(Eric Long)。
项目成果
期刊论文数量(0)
专著数量(0)
科研奖励数量(0)
会议论文数量(0)
专利数量(0)
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