靶向筛选高保真的FnCpf1用于哺乳动物基因组编辑

结题报告
项目介绍
AI项目解读

基本信息

  • 批准号:
    31871247
  • 项目类别:
    面上项目
  • 资助金额:
    60.0万
  • 负责人:
  • 依托单位:
  • 学科分类:
    C0602.基因表达及非编码序列调控
  • 结题年份:
    2022
  • 批准年份:
    2018
  • 项目状态:
    已结题
  • 起止时间:
    2019-01-01 至2022-12-31

项目摘要

The most exciting applications of the CRISPR/Cas9(Cpf1)-mediated targeted gene editing technologies are the results of curing genetic diseases with animal disease models as the next generation biotech drug. Off-target effects are still the key issue for the application for the FnCpf1-mediated genome engineering for patients and dissection of mammalian gene function. To address it, different strategies have been adopted, while, so far, it has not been satisfactorily solved. To identify high fidelity FnCpf1, a member of Cpf1 family, which has genome editing activity from our previous study, here we will generate a large library of FnCpf1 variants and screen with the reporter platform/E.coli based selection. Also, direct repeat sequence is one of key components for FnCpf1’s function; in principle, its engineering should be linked with the alteration of the corresponding activity and fidelity. Then we will take advantage of this specific high fidelity FnCpf1 system with another gene editing tool, AAV, to perform in situ genetic correction of X-linked juvenile retinoschisis patient-specific RS1 mutation. The development of the new high fidelity FnCpf1 system will pave a way for the clinical in situ gene therapy and dissection of mammalian novel gene function.
FnCpf1作为新一代的基因治疗药物在疾病的治疗上和哺乳动物基因功能解析上具有广阔的应用前景,但最重要的缺点在于DNA识别与切割过程中出现的脱靶问题。目前该重要科学问题仍然没有得到很好解决。鉴于此,本研究拟以获得新型高保真FnCpf1系统为研究导向,通过多种方法对FnCpf1蛋白编码基因进行定向改造并获得大规模携带有突变FnCpf1的突变库,突变相关的DR序列,以带有报告基因的HEK-293细胞等为靶细胞,结合细菌筛选体系,筛选出新型高保真FnCpf1系统。在此基础上,利用此新型高保真FnCpf1系统对性连锁少年性视网膜劈裂致病基因RS1进行修复。本项目的开展对探索基于FnCpf1的新型生物技术药物来治疗疾病和哺乳动物基因功能的解析具有重要意义。

结项摘要

FnCpf1(FnCas12a)作为新一代的基因组编辑工具在疾病的治疗上和基因功能解析上具有广阔的应用前景,但该工具仍然有一些缺点。鉴于此,本研究拟以获得新型FnCpf1系统为研究导向,通过多种方法对FnCpf1蛋白编码基因进行定向改造并获得大规模携带有突变FnCpf1的突变库,突变相关的DR序列,利用特定的筛选系统,筛选出新型FnCpf1系统。经过项目的执行,完成了FnCpf1突变库的构建,利用前期建立的方法对突变体进行了筛选,并获得了高活性和有保真性的FnCpf1。该工作对于基因编辑的应用奠定了较好的基础。同时,考虑学科的发展,项目研发了高保真的SauriCas9。因为SauriCas9具有分子量小等优点,另外对PAM识别具有一定的灵活性,所以,SauriCas9在基因治疗方面具有一定的优势。高保真的SauriCas9对于FnCpf1具有一定的互补性。另外,构建了基于GFP-TK-NEO的基因编辑效率评估系统。评估系统对于研发新型基因编辑工具具有重要意义。该系统可以实现多种不同酶的识别,对研究和优化基因编辑酶奠定了基础。考虑到基因编辑作为新型技术,将其应用于生物医学将可以更好的实现其价值。利用FnCpf1的旁切活性,研发了针对流感耐药基因和球虫的分子检测。这些应用研究为FnCpf1用于病原体检测提供了技术支撑。建立了RNP为基础的球虫基因编辑方法。这些为球虫新一代疫苗研发奠定了坚实的基础。本项目的完成对探索基于新型生物技术药物来治疗临床疾病、分子育种,疫苗研发和基因功能解析具有重要意义。

项目成果

期刊论文数量(6)
专著数量(0)
科研奖励数量(0)
会议论文数量(0)
专利数量(1)
An ultrasensitive, rapid and portable method for screening oseltamivir-resistant virus based on CRISPR/Cas12a combined with immunochromatographic strips.
基于CRISPR/Cas12a结合免疫层析试纸条的超灵敏、快速、便携式筛查奥司他韦耐药病毒的方法
  • DOI:
    10.3724/abbs.2022163
  • 发表时间:
    2022-11-25
  • 期刊:
    Acta biochimica et biophysica Sinica
  • 影响因子:
    3.7
  • 作者:
  • 通讯作者:
Green Fluorescent Protein Tagged Polycistronic Reporter System Reveals Functional Editing Characteristics of CRISPR-Cas
绿色荧光蛋白标记的多顺反子报告系统揭示了 CRISPR-Cas 的功能编辑特征
  • DOI:
    10.1089/crispr.2021.0056
  • 发表时间:
    2022-01-25
  • 期刊:
    CRISPR JOURNAL
  • 影响因子:
    3.7
  • 作者:
    Yang,Fayu;Zhang,Hao;Gu,Feng
  • 通讯作者:
    Gu,Feng
FnCas12a/crRNA-Mediated Genome Editing in Eimeria tenella.
FnCas12a/crRNA 介导的柔嫩艾美耳球虫基因组编辑
  • DOI:
    10.3389/fgene.2021.738746
  • 发表时间:
    2021
  • 期刊:
    Frontiers in genetics
  • 影响因子:
    3.7
  • 作者:
    Cheng P;Zhang Z;Yang F;Cai S;Wang L;Wang C;Wang M;Liu Y;Fei C;Zhang L;Xue F;Gu F
  • 通讯作者:
    Gu F
RPA assay coupled with CRISPR/Cas12a system for the detection of seven Eimeria species in chicken fecal samples
RPA 测定与 CRISPR/Cas12a 系统结合用于检测鸡粪便样本中的七种艾美耳球虫
  • DOI:
    10.1016/j.vetpar.2022.109810
  • 发表时间:
    2022-09-29
  • 期刊:
    VETERINARY PARASITOLOGY
  • 影响因子:
    2.6
  • 作者:
    Cheng, Peipei;Wu, Yuting;Gu, Feng
  • 通讯作者:
    Gu, Feng
Novel Arginine End-Tagging Antimicrobial Peptides to Combat Multidrug-Resistant Bacteria
新型精氨酸末端标记抗菌肽可对抗多重耐药细菌
  • DOI:
    10.1021/acsami.1c19305
  • 发表时间:
    2022
  • 期刊:
    ACS Applied Materials & Interfaces
  • 影响因子:
    9.5
  • 作者:
    Shang Lu;Wu Yuting;Wei Nan;Yang Fayu;Wang Mi;Zhang Lifang;Fei Chenzhong;Liu Yingchun;Xue Fuequn;Gu Feng
  • 通讯作者:
    Gu Feng

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  • 作者:
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  • 通讯作者:
    谷峰
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  • DOI:
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  • 发表时间:
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  • 期刊:
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  • 影响因子:
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  • 作者:
    DING Ting;王静;刘晓丽;李文良;LI Wen-liang;谷峰;LIU Xiao-li;马勇杰;GU Feng;MA Yong-jie;丁婷;WANG Jing
  • 通讯作者:
    WANG Jing
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  • 发表时间:
    2012
  • 期刊:
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  • 影响因子:
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  • 作者:
    谷峰;邱永志;靳正忠;李应罡;高晓阳;LI Sheng-yu1,GU Feng2,QIU Yong-zhi2,JIN Zheng-zhong1,LI Ying-;2.Tarim Oilfield Branch,PetroChina Company,Ltd.,Korla 841000,;3.Xinjiang Institute of Electric Power Designing,Urumqi 83000;4.Graduate University of Chinese Academy of Scienc
  • 通讯作者:
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  • DOI:
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  • 发表时间:
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  • 期刊:
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  • 作者:
    范冬冬;雷加强;李生宇;王永昌;邱永志;谷峰;闫增辉;许波;杜文意;周宏伟;刘尚
  • 通讯作者:
    刘尚
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  • 发表时间:
    2008
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    --
  • 作者:
    菊池純一;谷峰;南田大樹;伊森徹
  • 通讯作者:
    伊森徹

其他文献

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利用ABE修复家族性高胆固醇血症致病基因LDLR突变
  • 批准号:
  • 批准年份:
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AI项目解读示例

课题项目:调控A型流感病毒诱导IFN-β表达的机制研究

AI项目摘要:

本研究聚焦于TRIM2蛋白在A型流感病毒诱导的IFN-β表达中的调控机制。A型流感病毒是全球性健康问题,其感染可导致严重的呼吸道疾病。IFN-β作为关键的抗病毒因子,其表达水平对抗病毒防御至关重要。然而,TRIM2如何调控IFN-β的表达尚未明确。本研究假设TRIM2通过与病毒RNA或宿主因子相互作用,影响IFN-β的产生。我们将采用分子生物学、细胞生物学和免疫学方法,探索TRIM2与A型流感病毒诱导IFN-β表达的关系。预期结果将揭示TRIM2在抗病毒免疫反应中的作用,为开发新的抗病毒策略提供理论基础。该研究对理解宿主抗病毒机制具有重要科学意义,并可能对临床治疗流感病毒感染提供新的视角。

AI项目思路:

科学问题:TRIM2如何调控A型流感病毒诱导的IFN-β表达?
前期研究:已有研究表明TRIM2参与抗病毒反应,但其具体机制尚不明确。
研究创新点:本研究将深入探讨TRIM2在IFN-β表达中的直接作用机制。
技术路线:包括病毒学、分子生物学、细胞培养和免疫检测技术。
关键技术:TRIM2与病毒RNA的相互作用分析,IFN-β启动子活性检测。
实验模型:使用A型流感病毒感染的细胞模型进行研究。

AI技术路线图

        graph TD
          A[研究起始] --> B[文献回顾与假设提出]
          B --> C[实验设计与方法学准备]
          C --> D[A型流感病毒感染模型建立]
          D --> E[TRIM2与病毒RNA相互作用分析]
          E --> F[TRIM2对IFN-β启动子活性的影响]
          F --> G[IFN-β表达水平测定]
          G --> H[TRIM2功能丧失与获得研究]
          H --> I[数据收集与分析]
          I --> J[结果解释与科学验证]
          J --> K[研究结论与未来方向]
          K --> L[研究结束]
      
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