CHARACTERIZATION OF PROTEIN PHOSPHORYLATION OF HUMAN CHK2 PROTEIN KINASE
人 CHK2 蛋白激酶的蛋白磷酸化特征
基本信息
- 批准号:8361353
- 负责人:
- 金额:$ 1.08万
- 依托单位:
- 依托单位国家:美国
- 项目类别:
- 财政年份:2011
- 资助国家:美国
- 起止时间:2011-01-01 至 2011-12-31
- 项目状态:已结题
- 来源:
- 关键词:Amino AcidsCHEK2 geneChargeCyclic AMP-Dependent Protein KinasesDataDissociationFourier transform ion cyclotron resonanceFundingGrantHumanIonsIsomerismLinkMass Spectrum AnalysisMeasurementMethodsNational Center for Research ResourcesParentsPeptidesPhosphopeptidesPhosphoric AcidsPhosphorylated PeptidePhosphorylationPhosphorylation SitePhosphotransferasesPrincipal InvestigatorProtein KinaseResearchResearch InfrastructureResourcesSourceUnited States National Institutes of Healthbiomedical resourcecostmutantnanonovel
项目摘要
This subproject is one of many research subprojects utilizing the resources
provided by a Center grant funded by NIH/NCRR. Primary support for the subproject
and the subproject's principal investigator may have been provided by other sources,
including other NIH sources. The Total Cost listed for the subproject likely
represents the estimated amount of Center infrastructure utilized by the subproject,
not direct funding provided by the NCRR grant to the subproject or subproject staff.
We employed data-dependent analysis of protein phosphorylation using rapid acquisition nano-LC-linear-quadrupole ion trap Fourier transform ion cyclotron resonance mass spectrometry (nano-LC-FT-MS). The accurate m/z values of singly, doubly and triply-charged species calculated from the theoretical protonated masses of peptides phosphorylated at all Ser, Thr or Tyr residues of the human checkpoint 2 (Chk2) protein kinase were used for selected ion extraction and chromatographic analysis. Using a kinase-inactive Chk2 mutant as a control, accurate mass measurements from FT-MS and collision-induced dissociation spectra, 11 Chk2 auto-phosphorylation sites were assigned. Additionally, the presence of additional novel Chk2 phosphorylation sites in two unique peptides was deduced from accurate mass measurements. Selected ion chromatograms of all Chk2 phosphopeptides gave single peaks except in three cases in which two closely eluting species were observed. These pairs of phosphopeptides were determined to be positional isomers from MS/MS analysis. In this study, it was also found that ions due to the neutral loss of phosphoric acid from the parent peptide ion were not prominent in 18 of 36 MS/MS spectra of O-linked Chk2 phosphopeptides. Thus, accurate mass-driven analysis and rapid parallel MS/MS acquisition is a useful method for the discovery of new phosphorylation sites that is independent of the signature losses from phosphorylated amino acid residues.
该子项目是利用资源的众多研究子项目之一
由 NIH/NCRR 资助的中心拨款提供。子项目的主要支持
并且子项目的主要研究者可能是由其他来源提供的,
包括其他 NIH 来源。 子项目可能列出的总成本
代表子项目使用的中心基础设施的估计数量,
NCRR 赠款不直接向子项目或子项目工作人员提供资金。
我们使用快速采集纳米LC线性四极离子阱傅里叶变换离子回旋共振质谱(纳米LC-FT-MS)对蛋白质磷酸化进行数据依赖分析。根据人类检查点 2 (Chk2) 蛋白激酶的所有 Ser、Thr 或 Tyr 残基处磷酸化的肽的理论质子化质量计算出单电荷、双电荷和三电荷种类的准确 m/z 值,用于选择离子提取和色谱分析分析。 使用激酶失活的 Chk2 突变体作为对照,通过 FT-MS 和碰撞诱导解离谱进行精确质量测量,分配了 11 个 Chk2 自磷酸化位点。 此外,通过精确的质量测量推断出两种独特肽中存在额外的新型 Chk2 磷酸化位点。 所有 Chk2 磷酸肽的选定离子色谱图均显示单峰,但观察到两种紧密洗脱的三种情况除外。 MS/MS 分析确定这些磷酸肽对是位置异构体。 在这项研究中,还发现由于母体肽离子中磷酸中性损失而产生的离子在 O-连接 Chk2 磷酸肽的 36 个 MS/MS 谱图中的 18 个中并不突出。 因此,精确的质量驱动分析和快速并行 MS/MS 采集是发现新磷酸化位点的有用方法,该位点与磷酸化氨基酸残基的特征丢失无关。
项目成果
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