Glycosylation and Biogenesis of Streptococcal Adhesins
链球菌粘附素的糖基化和生物合成
基本信息
- 批准号:10227893
- 负责人:
- 金额:$ 36.29万
- 依托单位:
- 依托单位国家:美国
- 项目类别:
- 财政年份:2020
- 资助国家:美国
- 起止时间:2020-08-03 至 2023-02-28
- 项目状态:已结题
- 来源:
- 关键词:BacteriaBacterial AdhesinsBacterial InfectionsBacterial ProteinsBasic ScienceBig DataBiochemicalBiochemistryBiogenesisBiological ProcessBiologyComplexCrystallizationDevelopmentDevicesElementsEndoplasmic ReticulumEnvironmentEnzymesEscherichia coliExhibitsFamilyFundingFutureGTPase-Activating ProteinsGene ClusterGeneticGenomicsGlucosyltransferaseGlycobiologyGlycoproteinsGlycoside HydrolasesGram-Positive BacteriaHomeostasisInterdisciplinary StudyLectinLinkMediatingMicrobial BiofilmsModelingMolecularMolecular ChaperonesNamesOralOral MicrobiologyOral cavityOral healthOrganismPathway interactionsPeer ReviewPhenotypePlayPolysaccharidesProcessProtein FamilyProtein GlycosylationProtein PrecursorsProtein SecretionProteinsProteomicsPublishingQuality ControlRecombinantsReportingResearchResolutionRoleSeriesSerineStaphylococcus aureusStreptococcusStreptococcus adhesinStructureSystemTestingVirulenceWorkbacterial communitybacterial fitnesscombatfrontierglucosidaseglycosylationglycosyltransferasein vivoinsightmicrobialmicrobiotanovelnovel strategiesoral biofilmoral commensaloral streptococcipathogenpathogenic bacteriaprotein complexprotein foldingstructural biologytherapeutic targetthree dimensional structure
项目摘要
Essential to oral biofilm development is the initial colonization by oral streptococci. The abundant oral
streptococci keep pathogens at bay. We have used the most abundant oral streptococcus, Streptococcus
parasanguinis as a model to study bacterial colonization and identified a new family of bacterial serine-rich
repeat proteins (SRRPs) named “fimbriae-associated protein-1” (Fap1). Fap1 is heavily glycosylated, and
glycosylation of Fap1 is crucial for bacterial biofilm formation. Since our discovery of Fap1, Fap1-like SRRPs
have been identified from numerous Gram-positive bacteria and implicated in bacterial fitness and virulence.
Our studies have led to the groundbreaking discovery of a new Fap1 biosynthetic pathway. We have
demonstrated that the Fap1 biogenesis is controlled by a gene cluster encoding a series of novel
glycosyltransferases and unique accessory secretion proteins. Biogenesis of SRRPs has now emerged as a
new paradigm to investigate bacterial protein glycosylation and secretion. During our study of Fap1
glycosylation, we have defined a complete glycosylation pathway that synthesizes a novel Fap1 glycan. In the
study of Fap1 secretion, we have identified a protein complex consisting of three distinct glycosylation
associated proteins Gap1, 2 and 3 that work in concert to modulate the Fap1 maturation and biogenesis.
Further, we have determined the high resolution 3-dimensional structure of the Gap1/2/3 complex, which
uncovered new mechanistic insights for this 3-protein complex. Gap1 and Gap2 exhibit dual functions in the
biogenesis of Fap1. 1), Gap1 and Gap2 modulates the formation of the protein complex as a molecular
chaperone. 2), Gap1 and Gap2 function as a glucosyltransferase and glucosidase respectively in the quality
control of Fap1 maturation and biogenesis. The Gap protein complex resembles the three-key elements in the
eukaryotic quality control system dedicated to glycosylated proteins, hence we will continue our basic science
discovery of new biology and biochemistry linked to maturation and biogenesis of Fap1 & other SRRPs.
Aim 1 Determine how Gap1 functions as a molecular chaperone for Gap2 and as a key quality control
glycosyltransferase to process Fap1 precursor during Fap1 biogenesis. We will use genetic, biochemical,
structural biology, and glycobiology approaches to investigate how Gap1 stabilizes Gap2 as a molecular
chaperone, and how Gap1 acts as a quality control glycosyltransferase to process Fap1 precursor.
Aim 2 Define the roles played by Gap2 as a molecular chaperone for Gap3 and as a key quality control
glucosidase during Fap1 biogenesis. We will determine how Gap2 assists Gap3 as an accessory
chaperone, and coordinates with Gap1 and Gap3 to process Fap1, thus modulating the Fap1 biogenesis.
As biogenesis of SRRPs is highly conserved in Gram-positive bacteria, deciphering novel molecular insight to
this new protein complex as a quality control system will offer new opportunities to develop new strategies to
maintain healthy oral cavity as well as to combat bacterial infections.
口腔生物膜形成的关键是口腔链球菌的初始定植。
链球菌可阻止病原体。我们使用了最丰富的口腔链球菌,即链球菌。
parasanguinis作为研究细菌定植的模型并鉴定了富含丝氨酸的新细菌家族
名为“菌毛相关蛋白 1”(Fap1) 的重复蛋白 (SRRP) 被高度糖基化,并且
自从我们发现 Fap1、Fap1 样 SRRP 以来,Fap1 的糖基化对于细菌生物膜的形成至关重要。
已从许多革兰氏阳性细菌中鉴定出这些细菌,并与细菌的适应性和毒力有关。
我们的研究突破性地发现了新的 Fap1 生物合成途径。
Fap1 的生物发生是由编码一系列新颖的基因簇控制的
糖基转移酶和独特的辅助分泌蛋白的生物发生现已成为一种新的研究方法。
在我们研究 Fap1 期间研究细菌蛋白糖基化和分泌的新范例。
糖基化,我们定义了合成新型 Fap1 聚糖的完整糖基化途径。
通过对 Fap1 分泌的研究,我们发现了一种由三种不同糖基化组成的蛋白质复合物
相关蛋白 Gap1、2 和 3 协同调节 Fap1 成熟和生物发生。
此外,我们还确定了 Gap1/2/3 复合体的高分辨率 3 维结构,其中
发现了这种 3 蛋白复合物的新机制见解,在该复合物中表现出双重功能。
Fap1 1)、Gap1 和 Gap2 调节蛋白质复合物作为分子的形成。
2)、Gap1和Gap2在质量上分别起到葡萄糖基转移酶和葡萄糖苷酶的作用。
Gap 蛋白复合物类似于 Fap1 成熟和生物发生的三个关键元件。
致力于糖基化蛋白质的真核质量控制系统,因此我们将继续我们的基础科学
与 Fap1 和其他 SRRP 的成熟和生物发生相关的新生物学和生物化学的发现。
目标 1 确定 Gap1 如何充当 Gap2 的分子伴侣以及关键的质量控制
糖基转移酶在 Fap1 生物发生过程中处理 Fap1 前体,我们将使用遗传、生物化学、
结构生物学和糖生物学方法研究 Gap1 如何稳定 Gap2 作为分子
分子伴侣,以及 Gap1 如何作为质量控制糖基转移酶来处理 Fap1 前体。
目标 2 定义 Gap2 作为 Gap3 分子伴侣和关键质量控制所发挥的作用
Fap1 生物发生过程中的葡萄糖苷酶 我们将确定 Gap2 如何作为辅助手段协助 Gap3。
分子伴侣,并与 Gap1 和 Gap3 协调处理 Fap1,从而调节 Fap1 的生物发生。
由于 SRRP 的生物发生在革兰氏阳性菌中高度保守,因此破译了新的分子见解
这种新的蛋白质复合物作为质量控制系统将为开发新策略提供新的机会
保持口腔健康并对抗细菌感染。
项目成果
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